谈一谈荧光定量PCR管的实验原理及操作使用
荧光定量PCR管的实验原理:
实时荧光定量聚合酶链反应(PCR)是指同时监测PCR过程的能力。因此,可以在PCR扩增过程中收集数据,而不是在PCR后。这给基于PCR的DNA和RNA定量方法带来了革命性的变化。在实时荧光定量PCR(qPCR)中,反应的特征是在循环中检测到目标扩增的时间点,而不是在一定循环数后目标分子的累积扩增量。目标核酸的初始拷贝数越高,荧光显著增加的速度越快。相反,终点试验(也称为“读数板试验”)测量PCR循环结束时PCR产物的累积量。
荧光定量PCR管的操作使用:
1、样品制备
根据实验需要,向cDNA模板中加水进行适当稀释,涡旋混合和离心,根据检测到的样本和基因的实际数量计算样本添加系统,根据系统添加ddH2O、qPCRmix、引物,制备一管混合、涡旋混合、离心。准备适量的qPCR八排板或96孔板。在这里,我们使用八排试管,将它们放在冰上进行操作,然后将上一步中混合的混合物压至19μL,每孔添加一μL到八排孔中。
2、增加模板
向每个孔添加1μLcDNA模板。添加样品后,盖住八排管盖,并尝试从孔边缘压缩管盖。涡流混合和离心以去除气泡。
3、计算机响应
操作机器前的程序设置如下:设置反应温度,设置孔板信息,将样品放入仪器,开始反应。
4、导出数据
反应后,获得qPCR数据。根据溶解曲线,检查数据的有效性,将数据导出为Excel文件并保存。
5、实验结束
实验结束后,打开qPCR仪器,取出8根相连的试管,盖上qPCR仪器并关闭计算机和仪器。